PRONAGRO
SECRETARÍA DE AGRICULTURA Y GANADERÍA (S.A.G.) PROGRAMA NACIONAL DE DESARROLLO AGROALIMENTARIO (PRONAGRO)
UN ESTUDIO BIBLIOGRÁFICO Y RECOMENDACIONES TÉCNICAS PARA EL CULTIVO DE TILAPIA EN ESTANQUES EN HONDURAS
MARIO FRANCISCO GUERRERO
CADENA ACUÍCOLA
TEGUCIGALPA, M.D.C.
ÍNDICE RESUMEN………………………………………………………………………….…..1 1. CONDICIONES AMBIENTALES Y RECURSOS HÍDRICOS PARA LA PRODUCCIÓN DE TILAPIA EN HONDURAS 1.1. Honduras y el medio ambiente………………………………………………….2 1.2. Ríos de Honduras………………………………………………………………...2 1.3. Lagos………………………………………………………………………………4 1.4. Lagunas……………………………………………………………………………4 1.4.1. Laguna de Caratasca………………………………………………………….4 1.4.2. Laguna de Brus…………………………………………………………………4 1.4.3. Laguna de Ebano (Ibans) y de Criba...………………………………………5 1.4.4. Laguna de Guaymoreto………………………………………………………..5 1.4.5. Laguna Quemada o Laguna de Los Micos………………………………….5 1.4.6. Laguna Tinta……………………………………………………………………5 1.4.7. Laguna de Alvarado……………………………………………………………5 1.4.8. Laguna de Ticamaya…………………………………………………………..5 1.4.9. Laguna de Jucutuma…………………………………………………………..5 1.4.10. Laguna de Toloa………………………………………………………………5 1.5. Sustentabilidad…………………………………………………………………...5 1.5.1. Tratamiento de descargas…………………………………………………….6 2. LA ACUICULTURA EN HONDURAS 2.1. Cultivo de peces………………………………………………………………….7 2.2. La tilapia en Honduras…………………………………………………………...7 2.3. Especies de tilapia………………………………………………………………..8 2.4. La tilapia como fuente de proteína.. ……………………………………………8 2.5. Aspectos biológicos de la tilapia………………………………………………..9 2.6. Caracteres sexuales……………………………………………………………10 2.7. Hábitat……………………………………………………………………………11 3. ESPECIES DE TILAPIA CON POTENCIAL PARA LA ACUICULTURA EN HONDURAS 3.1. Oreochromis niloticus…………………………………………………………..12 3.1.1. Alimentación…………………………………………………………………..12 3.1.2. Reproducción…………………………………………………………………13 3.1.3. Rangos de tolerancia ambiental…………………………………………….13 3.2. Oreochromis mossambica……………………………………………………..13 3.2.1. Alimentación………………………………………………............................14 3.2.3. Reproducción………………………………………………………………….14 3.2.4. Rangos de tolerancia ambiental…………………………………………….14 3.3. Oreochromis aureus…………………………………………………………....14 3.3.1. Alimentación…………………………………………………………………..15 3.3.2. Reproducción………………………………………………………………….15 3.3.3. Rangos de tolerancia ambiental…………………………………………….15 3.4. La tilapia roja Oreochromis spp……………………………………………….16
4. PARÁMETROS FÍSICOS, QUÍMICOS Y BIOLÓGICOS A CONSIDERAR EN EL CULTIVO DE TILAPIA 4.1. Oxígeno…………………………………………………………………………..17 4.1.1 Factores que disminuyen el nivel de oxígeno disuelto…………………….17 4.1.2. Tipos de aireación…………………………………………………………….18 4.2. Temperatura……………………………………………………………………..18 4.3. Dureza del agua…………………………………………………………………19 4.4. pH…………………………………………………………………………………19 4.5. Nitritos……………………………………………………………………………19 4.6. Dióxido de carbono……………………………………………………………..20 4.7. Amoniaco………………………………………………………………………...20 4.8. Variables…………………………………………………………………………20 4.9. Luz………………………………………………………………………………..21 4.10. Nitrógeno……………………………………………………………………….21 4.11. Fósforo………………………………………………………………………….21 4.12. Plancton………………………………………………………………………...22 4.12.1. Fitoplancton………………………………………………………………….22 4.12.2. Zooplancton………………………………………………………………….23 4.12.3. Importancia del Plancton en la Acuicultura……………………………….24 5. CULTIVO DE TILAPIA EN ESTANQUES 5.1. Factores a considerar……………………………..........................................26 5.2. Sistemas de Cultivo…………………………………………………………….28 5.2.1. Cultivo Extensivo……………………………………………………………...28 5.2.2. Sistema Semi-intensivo………………………………………………………28 5.2.3. Sistema Intensivo……………………………………………………………..28 5.2.4. Consideraciones previas para elegir el sistema de cultivo……………….29 5.3. Construcción de estanques……………………………………………………30 5.4. Cultivo de tilapia…………………………………………………………………32 5.4.1. Cultivo de machos y hembras……………………………………………….32 5.4.2 cultivo monosexo (solo machos)…………………………………………….33 5.5. Siembra…………………………………………………………………………..33 5.6. Precría……………………………………………………………………………33 5.7. Levante…………………………………………………………………………..34 5.8. Engorde…………………………………………………………………………..34 5.9. Aspectos importantes sobre el alimento……………………………………...34 5.9.1. Forma de alimentar…………………………………………………………...34 5.9.2. Determinación de la ración alimenticia……………………………………..35 5.10. Fertilización…………………………………………………………………….36 5.10.1. Fertilizante Químico…………………………………………………………37 5.10.2. Abonos Animales……………………………………………………………38 5.10.3. Composición del abono animal…………………………………………….38 5.10.4. Aplicación de fertilizantes…………………………………………………..39 5.10.5. Problemas de oxígeno causados por fertilizantes orgánicos…………..39 5.10.6. Reglas para la aplicación de fertilizantes orgánicos………………….....40 5.10.7. Disco Secchi…………………………………………………………………41 5.11. Alcalinidad y encalado………………………………………………………...42 5.12. Principales enfermedades y buenas prácticas de manejo sanitario de la tilapia…………………………………………………………………………………..42
5.12.1. Septicemia causada por pseudomonas…………………………………..43 5.12.2. Enfermedades causadas por parásitos: Gyrodactylosis y Dactylogyrosis………………………………………………………………………..44 5.12.3. Desinfección de las instalaciones y equipo………………………………44 5.13. Buenas prácticas de cosecha………………………………………………..44 5.13.1. Cosecha para depuración de peces………………………………………46 5.13.2. Equipo de Transporte……………………………………………………….46 5.13.3. Cosecha para sacrificio del producto fresco……………………………..46 5.13.4. Características del agua para el procesamiento………………………...46 6. PRODUCCIÓN DE ALEVINES 6.1. Cultivo de reproductores……………………………………………………….47 6.2. Selección de reproductores……………………………………………………47 6.3. Estanques de reproductores…………………………………………………..48 6.4. Recolección de semillas………………………………………………………..48 6.5. Reversión sexual………………………………………………………………..49 6.6. Preparación del alimento hormonado………………………………………...49 6.7. Alimentación de Alevines………………………………………………………49 6.8. Infraestructuras para alevines…………………………………………………50 6.8.1. Piletas………………………………………………………………………….50 6.8.2. Jaulas…………………………………………………………………………..51 6.9. Producción de alevines de tilapia genéticamente machos (TGM)………...51 6.10. Manejo y transporte de alevines……………………………………………..53 6.10.1. Manipulación de alevines…………………………………………………..53 6.10.2. Temperatura óptima del agua para alevines de tilapia………………….53 6.10.3. Contenido proteínico del alimento de alevines…………………………..53 6.10.4. Transporte y empaque de alevines para su posterior siembra de engorde………………………………………………………………………………..53 7. COMERCIALIZACIÓN DE LA TILAPIA 7.1. ¿Cómo conseguir la información de mercado?..........................................55 7.2. ¿Qué es la comercialización?.....................................................................55 BIBLIOGRAFÍA…………….………………………………………………………..57 Lista de Mapas Mapa 1.- Principales Ríos de Honduras………………………………………….…3 Lista de Cuadros Cuadro 1.- Efectos de las diferentes concentraciones de oxígeno disuelto en el agua, expresado en partes por millón……………………………………………..17 Cuadro 2.- Cuadro general de parámetros a monitorear contantemente en proyecto de cultivo de tilapia………………………………………………………..20 Lista de Imágenes Imagen 1.- Anatomía Externa de la tilapia nilótica Orechromis niloticus………..9 Imagen 2.- Espécimen de tilapia macho…………………………………………..10 Imagen 3.- Espécimen de Tilapia hembra…………………………………………10
Imagen 4.- Ejemplar de tilapia nilótica Orechromis niloticus…………………….12 Imagen 5.- Ejemplar de Tilapia Mozambica Oreochromis mossambica……….13 Imagen 6.- Oreochromis aureus……………………………………………………15 Imagen 7.- Comparación: a la Izquierda tilapia gris (Oreochromis niloticus), a la derecha el híbrido, la tilapia roja (Orechromis spp.)……………………………...17 Imagen 8.- El fitoplancton es uno de los componentes esenciales para el desarrollo de miles de organismos en ambientes acuáticos…………………….23 Imagen 9.- Los organismos del zooplancton son consumidores, son capaces de presentar locomoción………………………………………………………………..23 Imagen 10.- Midiendo la transparencia del agua con disco Secchi…………….42 Imagen 11.- La elección de los reproductores será realizada por expertos. Los organismos seleccionados deben cumplir con todos los requerimientos genéticos y fenotípicos………………………………………………………………47 Imagen 12.- Alevines en piletas de concreto…………………………………...…50 Imagen 13.- Alevines en jaulas……………………………………………………..51
Lista de Figuras Figura 1.- Identificación sexual de una hembra y un macho de tilapia Orechromis nilotucus………………………………………………………………...11 Figura 2.- Efectos del crecimiento de la tilapia por la temperatura……………..18 Figura 3.- Escala de pH……………………………………………………………..19 Figura 4.- Componentes de una laguna natural…………………………………..24 Figura 5.- Partes de un estanque común para piscicultura (FAO)……………...26 Figura 6.- Estación piscícola con diferentes unidades de producción (FAO)….27 Figura 7.- La densidad de siembra es importante, debido a los organismos responden directamente a las condiciones ambientales y la disponibilidad de recursos (Modificado de Bocek, 2003 b)…………………………………………..29 Figura 8.- Vista longitudinal del perfil del estanque………………………………30 Figura 9.- Vista superior de un proyecto de sistema de cultivo de tilapia para engorde, en estanques de 1000 m²………………………………………………..31 Figura 10.- Estanque con baja concentración de oxígeno disuelto (Bocek, 2003c)…………………………………………………………………………………40 Figura 11.- Partes y estructura de un disco Secchi típico………………………41 Figura 12.- Cosecha con trasmallo (SAGARPA, 2012)………………………….45 Figura 13. – Estanques pequeños para reproductores (Hsien-Tsang y Quintanilla, 2008)…………………………………………………………………….48 Figura 14.- Alimentación de alevines en comederos de plástico ((Hsien-Tsang y Quintanilla, 2008)…………………………………………………………………….50 Figura 15.- Esquema de producción de tilapias supermachos, bajo condiciones controladas (Hsien-Tsang y Quintanilla, 2008)…………………………………...52 Figura 16.-Empaquetamiento de alevines (SAGARPA, 2012)………………….54 Figura 17.- Transporte de alevines en bolsas plásticas (SAGARPA, 2012)…..55
RESUMEN En Honduras las necesidades alimentarias se agudizan más con el paso del tiempo y el crecimiento demográfico. La acuicultura es el cultivo de organismos y plantas acuáticas bajo condiciones controladas y tiene como finalidad la obtención de alimentos de alto contenido en proteínas. La Secretaría de Agricultura y Ganadería de Honduras (SAG) tiene como objetivo lograr que la producción agrícola nacional sea competitiva, sostenible y con capacidad para insertarse en la economía internacional, respondiendo a las necesidades del mercado interno e integrándose en un esquema de desarrollo humano, social, ambiental, basado en la autogestión, la participación comunitaria, el enfoque de equidad de género y el manejo sostenible de los recursos naturales. El Programa Nacional de Desarrollo Agroalimentario (PRONAGRO), es la dependencia de la Secretaría de Agricultura y Ganadería responsable de organizar actores público – privados: productores, procesadores, comercializadores, proveedores de servicio de apoyo y marco regulatorio en cadenas agroalimentarias y de valor.El enfoque de cadenas de valor supone que al comprender las interacciones comerciales y de provisión de servicios entre los diferentes actores de las cadenas, es posible que tanto las entidades públicas y privadas como las de cooperación al desarrollo, identifiquen puntos de intervención para:Aumentar la eficiencia y de este modo incrementar el valor generado en la cadena y mejorar la competitividad de ciertos actores. La Cadena Acuícola, desarrolla un sistema de compilación de datos que garantice las buenas prácticas acuícolas destinadas al cultivo de tilapia (Oreochromis sp.). La tilapia es un pez que ha desarrollado gran aceptación en el mercado nacional e internacional, debido a su carne de alta calidad y excelente presentación. En los últimos 10 años, el cultivo de tilapia en estanques ha sido una fuente fuente de ingresos para muchos acuicultores rurales en el territorio nacional. El cultivo de esta especie exótica, debe encaminarse a promover el desarrollo socioeconómico de la población rural que busca nuevas alternativas de ingreso. Las prácticas de cultivo de peces deben ser compatibles con el ambiente y perpetuar un entorno sano.
1. CONDICIONES AMBIENTALES Y RECURSOS HÍDRICOS PARA LA PRODUCION DE TILAPIA EN HONDURAS 1.1. Honduras y el medio ambiente La República de Honduras se encuentra ubicada en el centro de la región centroamericana y tiene una extensión territorial de 112,492 Km² y una población, a diciembre de 2012, de 7.935.846 personas. El país comparte fronteras con Guatemala, El Salvador y con Nicaragua. El país tiene una biodiversidad excepcionalmente alta en relación a su tamaño. Su ubicación tropical privilegiada entre dos océanos y sus condiciones topográficas crean una gran variedad de hábitats, desde bosques nublados a arrecifes coralinos, favorables para una alta diversidad de flora y fauna. La morfología predominante de Honduras es montañosa, con elevaciones de más de 1.000 metros que en algunos puntos superan los 2.000, muy quebrada, confuertes pendientes, el 60% de los suelos presentan pendientes mayores del 30%, múltiples cerros y colinas conformando muchas microcuencas. En Honduras, debido a su localización geográfica, no se dan las características típicas de las cuatro estaciones del año que conocemos en las latitudes medias. Sólo existen dos estaciones, la estación seca (Noviembre a Abril con picos en Septiembre) y la estación lluviosa (Mayo a Octubre con picos en Abril) (Otero, 2011). 1.2. Ríos de Honduras Los ríos de Honduras forman parte de uno de las dos vertientes que se distinguen en el territorio de Honduras de acuerdo al punto donde desembocan: la vertiente del Mar Caribe o la vertiente del Golfo de Fonseca (Océano Pacífico). (Mapa 1). Al interior del relieve de nuestro país se encuentra una red hidrográfica muy importante en el desarrollo de los ecosistemas, la vida humana y la producción acuícola. Esta red forma cuencas y microcuencas hasta formar los grandes ríos primarios que desembocan en las dos vertientes del territorio hondureño (Mejía y House, 2002). Las dos vertientes son El Mar Caribe o de las Antillas (vertiente del Atlántico) y la vertiente del Océano Pacífico. En la Vertiente del Mar Caribe o de las Antillas desembocan los siguientes grandes ríos (ordenado de mayor a menor extensión):
Segovia o Coco 550 Km. Patuca 500 Km. Ulúa 300 Km.
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Mapa 1.- Principales ríos de Honduras (UN, 2014).
Aguán 225 Km Chamelecón 200 Km. Tinto o Negro 215 Km. Cruta o Kruta 125 Km. Ibantara o Mocorón 92 Km. Plátano 85 Km. Guarunta o Warunta 85 Km. Sicre o Sigre 70 Km. Nacunta 65 Km. Leán 60 Km. Cangrejal 30 Km. Papaloteca 30 Km. Cuyamel-Chachaguala, Omoa 25 Km.
En la Vertiente del Océano Pacífico desembocan los siguientes grandes ríos: Choluteca 250 km. Goascorán 115 km. Nacaome 90 km. Negro 85 km. Afluentes del Lempa: Guarajambala 75 km. Torola 70 km. Sumpul 70 km. 3
1.3.Lagos El Lago de Yojoa es el único lago natural que posee Honduras y está ubicado entre los Departamentos de Cortés, Comayagua y Santa Bárbara a una altitud de 650 msnm. Tiene un perímetro de 50 kilómetros y un área de aproximadamente 90 kilómetros y está ubicado en una zona de alta precipitación pluvial con un promedio anual de 3000 mm. El nombre del lago se originó de las voces maya “Yoco-Ha” que significa agua acumulada sobre la tierra.Se alimenta de las corrientes subterráneas que proceden de la montaña de Santa Bárbara y Azul Meambar, tiene tres desagües uno visible al sur Río Jaitique y dos subterráneos el Río Zacapa y el Río Lindo al norte, que aparecen por la Montaña de Peña Blanca. Todos sus desagües llegan al Río Ulúa (Mejía y House, 2002). El lago de Yojoa es considerado un lago cálido y monomíctico (que solo mezcla las aguas una vez por año). Las aguas del lago se mezclan por algunas semanas en Diciembre y Enero. Durante el resto del año existe una estratificación térmica, con una termoclina ubicada a una profundidad que varia entre aproximadamente 12 y 16 m. La temperatura promedio del agua es 24,9 º C a 23,0 º C en la superficie y fondo respectivamente. El Hipolimnium (la parte por debajo de la termoclina) tiene poco oxigeno, hay evidencia que durante el periodo natural de estratificación, grandes o fuertes lluvias pueden causar mezclas irregulares de agua. Los impactos de esto pueden producir bajas en el oxigeno en las capas superiores (Otero, 2011). 1.4.Lagunas Solamente en la Costa Norte existen lagunas de considerable tamaño, en el centro y sur del territorio existen laguna pequeñas estacionales, es decir en su mayoría se secan enverano. 1.4.1. Laguna de Caratasca: formada por un sistema de lagunas divididas por canales naturales. Al Sur y al Este de la laguna se encuentran las Lagunas de Warunta, Tansin y Tilbalaca, todas de agua dulce debido a que son alimentadas por los ríos Warunta, Mocorón o Ibantara y las Lagunas de Cauquira y Cohunta. Hacia el Oeste está la Laguna de Tara que desemboca al mar por el crique de Tabacunta. La gran Laguna de Caratasca está ubicada al centro del complejo de lagunas, es de aguas salobres y está separada del mar por una faja angosta. La laguna mide 66 kilómetros de largo por 14 de ancho. El complejo de lagunas de Caratasca tiene dos entradas al mar una al oeste por Tabacunta y la otra por la Barra de Caratasca de 1 kilómetro de ancho y de 4 metros de profundidad. 1.4.2. Laguna de Brus: Se encuentra al Oeste de la Laguna de Caratasca, separada por el Río Patuca. Tiene 28 km de largo y 7 de ancho y se comunica 4
con el mar por medio de la Barra de Brus. Al sur de la Barra se encuentran dos pequeñas islas.En la laguna desembocan los ríos Sigre, al oriente desemboca un brazo del Río Patuca conocido como TumTum Crick. 1.4.3. Laguna de Ebano (Ibans) y de Criba: La Laguna de Ibans se comunica con la pequeña Laguna de Criba al oeste. Estas lagunas se comunican al mar por un canal deentrada que mide 500 metros y tiene una profundidad de 1.4 metros en época seca. La mayor longitud de la Laguna de Ibans es de 12 km. Las aguas del Río Tinto llegan a la laguna de Criba y también son alimentadas por corrientes que bajan de la Montaña de Baltimore. En la Laguna de Ibans se encuentran 6 pequeñas islas. 1.4.4. Laguna de Guaymoreto: Situada al Noreste de la ciudad de Trujillo y se comunica con la bahía por medio de un canal natural por donde pueden entrar pequeñas embarcaciones.Su mayor longitud es de 9 km. 1.4.5. Laguna Quemada o Laguna de Los Micos: Ubicada al Oeste de Tela. Desagua al mar por un canal natural ubicado entre las aldeas de San Juan y Tornabé. Es alimentada por pequeños ríos que proceden de las montañas del sur. 1.4.6. Laguna Tinta: Situada entre Punta Sal y el Río Tinto. 1.4.7. Laguna de Alvarado: Ubicada a orillas de la ciudad de Puerto Cortés y se comunica con el mar. Su longitud es de 5 km de largo por 2 km de ancho y una profundidad de 18 metros, sus aguas son saladas. 1.4.8. Laguna de Ticamaya: Situada al NE de San Pedro Sula, es una laguna en proceso desucesión avanzada (seca) provocada por las actividades humanas de los alrededores. 1.4.9. Laguna de Jucutuma: Se encuentra a 6 km al Norte de la ciudad de La Lima, Cortés. Tiene 5 km de largo y 3 km de ancho. 1.4.10. Laguna de Toloa: Situada en el extremo occidental del Departamento de Atlántida entre la Laguna de Los Micos y el Río Ulúa. Tiene 5 km de largo por 3 km de ancho y se comunica por medio de un canal con el Río Ulúa. 1.5. Sustentabilidad La sustentabilidad ambiental se refiere a la administración eficiente y racional de los bienes y servicios ambientales, de manera que sea posible el bienestar de la población actual, garantizando el acceso a éstos por los sectores más vulnerables, y evitando comprometer la satisfacción de las necesidades básicas y la calidad de vida de las generaciones futuras.
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1.5.1. Tratamiento de descargas Tratar las aguas empleadas en el cultivo antes de regresarlas al entorno, debe tomarse como una estrategia para conservar la calidad del ambiente y no como una obligación para cumplir las disposiciones oficiales en la materia (SAGARPA, 2012). La liberación de agua de las granjas acuícolas debería garantizar la minimización de alteraciones ecológicas en los cuerpos naturales acuáticos. El manejo adecuado de los recursos naturales asegura la perpetuidad de la producción y el desarrollo de las especies silvestres. El cultivo de Tilapia debe ser amigable con el ambiente, promover el desarrollo y el mantenimiento de ingresos que mejoren la calidad de vida de los acuicultores. El potencial que presenta el país para el cultivo de tilapia, es respaldado por un clima adecuado, aspectos ecológicos, la biología de la especie, los suelos y geología de Honduras. El cultivo de Tilapia en estanques de diferentes estructuras y componentes, puede ser la alternativa que las personas necesitan para mejorar sus ingresos y por ende, sus condiciones de vida.
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2. LA ACUICULTURA EN HONDURAS 2.1.Cultivo de peces La acuicultura se refiere al cultivo de organismos acuáticos, animales y vegetales, que cumplen su ciclo de vida total o parcialmente en el agua a través de diferentes sistemas y técnicas. Dichos cultivos son generalmente destinados al consumo humano, esparcimiento, conservación y repoblamiento de ambientes naturales, en este último caso, para especies nativas. El cultivo de peces es una alternativa que los productores han incorporado a sus sistemas productivos, con el objeto de diversificar su producción. El cultivo de peces posee gran importancia en la producción de proteína animal en las aguas tropicales ysubtropicales de todo el mundo, así como la generación de ingresos, particularmente en los países endesarrollo como Honduras. 2.2. La tilapia en Honduras Los primeros conocimientos que se tienen sobre la actividad acuícola en Honduras datan de mediados de los años 1930 cuando un lote de reproductores de tilapia nilótica (Oreochromis niloticus) fue introducido con procedencia de El Salvador. En 1955, el gobierno a través de la Secretaría deRecursos Naturales creó la Sub-Estación Acuícola "Jesús de Otoro", para el cultivo de camarón de agua dulce (Macrobrachium rosembergii), cuya actividad estuvo realizándose hasta 1958, cuando debido a diferentes problemas fue descontinuada. En 1968 la estación reinició actividades, esta vez orientadas al cultivo de tilapia. Posteriormente se construyeron otras dos sub-estaciones acuícolas, "la Sub-Estación Acuícola El Picacho y la Sub-Estación Acuícola de Santa Bárbara". En 1977 con la construcción del "Centro de Investigación Piscícola El Carao" en Comayagua, se dio inició un programa nacional de piscicultura, a través de las actividades de extensión y donación de alevines de tilapia, carpa y guapote. El programa dirigido desde la Estación Acuícola El Carao, se extendió también a las sub-estaciones de Jesús de Otoro, Santa Bárbara y El Picacho. La piscicultura de subsistencia se extendió a todo el país, ejercida por grupos de campesinos, patronatos o pequeños proyectos de personas individuales. En 1990, tomando como base el resultado de las investigaciones científicas sobre cultivo de tilapia, realizadas en El Carao, un grupo de inversionistas nacionales decidió iniciar un proyecto industrial de cultivo de tilapiaroja en Río Lindo, Cortés. El inicio y logros de ese proyecto estimularon a otros inversionistas a desarrollar nuevos proyectos, hasta que la piscicultura se convirtió en una actividad acuícola muy importante. Uno de los proyectos 7
industriales de tilapia, ha desarrollado también el cultivo industrial de tilapia en jaulas flotantes, que han sido instaladas en el Lago de Yojoa y El Cajón. En la actualidad tanto el gobierno como universidades del país poseen centros de investigación y capacitaciónacuícola cuyos objetivos primordiales son los de procurar la de identificación de los diferentes sectores delcultivo de tilapia, el estudio y análisis de los sistemas de producción, divulgación de información, asistenciatécnica y extensión, protección del ambiente y cultivos sostenibles. (USAID etal, 2008). 2.3. Especies de tilapia Actualmente se cultivan con éxito unas diez especies, en su mayoría del género Oreochromis. Como grupo las tilapias representan uno de los pecesmás ampliamente producidos en el mundo. Las especies más cultivadas son O. aureus, O. niloticus y O. mossambicus, así como varios híbridos de esta especie. La menos deseable es O. mossambicus a pesar de que fue la primera especie en distribuirse fuera de África; tanto como O. niloticus como O. Aureus crecen más rápido y alcanzan mayor tamaño queO. mossambicus, aunque requieren mayor tamaño para su reproducción. La tilapia roja es un híbrido proveniente de líneasmejoradas partiendo delas cuatro especies más importantes del género Oreochromis. Las especies parentales del híbrido son: O. aureus. O. niloticus, O. mossambicusy O. urolepis hornorum. Por estar emparentadas entre sí, sus comportamientos reproductivos y alimenticios sonsimilares (Nicovita, 2002). 2.4. La tilapia como fuente de proteína Debido a su capacidad de adaptación, y a la posibilidad de ser criada en diferentes sistemasde cultivo, su sabor y las características nutricionales de su carne, la tilapia se ha colocado en el segundo lugar de los peces de agua dulce más cultivados en el mundo. La producción mundial de las tilapias cultivadas sobrepasó en 1995 la cifra de 500 000 ton, que actualmente se haincrementado gracias al continuo crecimiento de su demanda (Toledo y García, 2000).Si se tiene en cuenta el alto déficit proteico de la humanidad y el hecho de que existen mercados suntuarios que demandan productos de bajo contenido de Colesterol, el cultivo de tilapias se convierte en una alternativa viable por su alta productividad y la siguiente composición (base fresca): Proteína total-------------------- 19.2% Grasas --------------------------- 2.3% Colesterol ----------------------- 0.0% Energía metabolizable ------- 96 kcal/100g Lo que la hace más saludable y alimenticia que la carne de cerdo, aves y res (Toledo y García, 2000). 8
2.5. Aspectos biológicos de la tilapia La tilapia es un pez teleósteo, del orden Perciforme perteneciente a la familia Cichlidae Originario de África, habita la mayor parte de las regiones tropicales del mundo, donde las condiciones son favorables para su reproducción y crecimiento. Es un pez de rápido crecimiento, se puede cultivar en estanques y en jaulas, soporta altas densidades, resiste condiciones ambientales adversas, tolera bajas concentraciones de oxígeno, es capaz de utilizar la productividad primaria de los estanques, y puede ser manipulado genéticamente. Presenta un solo orificio nasal a cada lado de la cabeza, que sirve simultáneamente como entrada y salida de la cavidad nasal. El cuerpo es generalmente comprimido y discoidal, raramente alargado. La boca es protáctil, generalmente ancha, a menudo bordeada por labios gruesos; las mandíbulas presentan dientes cónicos y en algunas ocasiones incisivos.
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Imagen 1.- Anatomía Externa de la tilapia nilótica Orechromis niloticus.
Para su locomoción poseen aletas pares e impares. Las aletas pares las constituyen las pectorales y las ventrales; las impares están constituidas por las aletas dorsales, la caudal y la anal. La parte anterior de la aleta dorsal y anal es corta, consta de varias espinas y la parte terminal de radios suaves, disponiendo sus aletas dorsales en forma de cresta. Taxonomía
Phyllum : Vertebrata Sub Phylum : Craneata Super clase : Gnostomata Serie : Piscis 9
Clase : Teleostomi Sub clase : Actinopterigii Orden : Perciformes Sub orden : Percoidei Familia : Cichlidae Género: Oreochromis
2.6. Caracteres sexuales La tilapia puede medir por lo menos 10 cm de largo y aproximadamente 20 g antes de que pueda determinarse su sexo.El sexado manual de los peces, consiste en revisar la papila urogenital de ejemplares de Tilapia mayores a 10 cm y de 30-50 gramos de peso. La hembra posee tres orificios mientras que el macho sólodos, por lo tanto esa diferencia se puede observar coloreando la papila con violeta de genciana. (Alianza para el Campo etal, 2008).
Imagen 2.- Espécimen de tilapia macho (Saavedra, 2006).
Imagen 3.- Espécimen de tilapia hembra (Saavedra, 2006).
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La siguiente figura muestra una hembra y un macho. La hembra tiene dos aberturas en la papila para permitir el paso de la orina y los huevos, mientras que el macho tiene únicamente una abertura para el paso del esperma y la orina (figura 1) (Bocek, 2003).
Figura 1.- Identificación sexual de una hembra y un macho de tilapia Orechromis nilotucus.
2.7. Hábitat Las tilapias pertenecientes al género Oreochromis, son capaces de vivir en una gran diversidad de ecosistemas acuáticos de regiones Tropicales y Subtropicales del mundo (algunas variedades de los híbridos se han adaptado a aguas templadas. Son capaces de tolerar diferentes condiciones ambientales (temperatura, oxígeno disuelto en el agua, turbidez, incidencia de luz, salinidad, etc.). Algunas especies constituyen el componente principal de muchas empresas acuícolas a nivel mundial. Pueden desarrollarse en cuerpos de agua con fondo arenoso, fangoso, con elevada cantidad de materia orgánica e incluso con fondos artificiales de cemento. En la actualidad se encuentran tanto en cautiverio y formando parte de la vida silvestre en algunas regiones del mundo.
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3. ESPECIES DE TILAPIA CON POTENCIAL PARA LA ACUICULTURA EN HONDURAS 3.1. Oreochromis niloticus La tilapia nilótica Oreochromis niloticus (Linnaeus, 1758), es un pez nativo de África, que va desde la parte superior Sur del río Nilo en la línea del Ecuador, al oeste con la Costa Atlántica. La especie ha favorecido muchos acuicultores debido a su capacidad detolerancia a una amplia gama de condiciones ambientales, rápido crecimiento, el éxito reproductivo y capacidad de alimentación trófica en diferentesniveles. Estos mismos rasgos les permiten ser una especie invasora extremadamente exitosa enambientes subtropicales y templados (Grammer et al, 2012).
Imagen 4.- Ejemplar de tilapia nilótica Orechromis niloticus.
3.1.1. Alimentación La tilapia del Nilo se sabe que se alimenta de fitoplancton, perifiton, plantas acuáticas, invertebrados, fauna béntica, detritus, películas bacterianas e incluso otros peces y huevos de peces. Dependiendo de la fuente de alimento, ya sea a través de filtrado o superficie suspensión pastoreo, atrapando en rico un bolo de plancton con moco excretada por las branquias (Bwanika et al, 2007).
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3.1.2. Reproducción Los peces macho inician la reproducción con la creación de un nido de desove, que está fuertemente custodiado. Cuando aumenta la temperatura del agua superior a 24° C, una hembra con voluntad selecciona el nido y pone sus huevos en el nido. Entonces estos son fertilizados por los machos antes de que la hembra los recoja en su boca (conocido como boca melancólico). Los huevos y las larvas que eclosionan luego se incubaron; de esta manera hasta que el saco vitelino es absorbido completamente (FAO 2012). 3.1.3. Rangos de tolerancia ambiental La tilapia del Nilo al parecer puede prosperar en cualquier hábitat acuático excepto en sistemas de ríos torrenciales. Los principales factores que limitan su distribución son la salinidad y la temperatura (Shipton et al. 2008).Los límites de supervivencia de O. niloticus se divulgan para mentir entre 11 y 42 ° C. La concentración de oxígeno disuelto no es un factor limitante para la tilapia del Nilo, como pueden tolerar niveles tan bajos como 3-4 mg/l (Boyd 2004). .3.2.
Oreochromis mossambica
Habita en ríos de curso lento, arroyos y aún hábitats acuáticos tales como lagos y lagunas, tanto en aguas dulces y salobres. La población, incluso se ha establecido en un atolón marino en el centro del Pacífico. Un hábitat original de la especie es la parte baja del río Zambezi, el centro de Mozambique (África del Este, 18 ° 46'S). Bajo condiciones más extremas en los límites de su área de distribución o en ambientes estresantes (por ejemplo, lagunas poco profundas, hábitats marginales), la especie maduran a un tamaño pequeño (retraso del crecimiento), y el rango de tamaño máximo de los machos pueden ser de entre 10-30 cm (Webb y Maughan, 2007).
Imagen 5.- Ejemplar de tilapia Mozambica Oreochromis mossambica.
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3.2.1. Alimentación La tilapia de Mozambique consume una amplia gama de alimentos, aunque predominantemente es un consumidor de material bentónico, incluyendo algas filamentosas y algas unicelulares, plantas acuáticas, plantas terrestres y los detritos orgánicos. También consumen cianobacterias, invertebrados acuáticos, tales como larvas de insectos, pequeñoscrustáceos, moluscos, en ocasiones se alimentan de forma oportunista de huevos de peces y pequeños juveniles de peces (Webb y Maughan, 2007). 3.2.3.Reproducción O. mossambicus es un pez polígamo, presenta dimorfismo sexual y la hembra presenta incubación bucal. Los machos maduran al inicio de la temporada de cría, se ubican en márgenes del cuerpo de agua poco profundos donde crean nidos en la arena (leks). Cada macho cava un pozo circular de poca profundidad, que esagresivamente defendido y utilizado para la exhibición y así atraer a una hembra receptiva. Después de la fertilización de los huevos dentro de la fosa, la hembra recogelos huevos en su boca, y se establece un territorio que defiende inquietante. Lareproducción está regulada por la temperatura conumbrales de desove para las especies reportadas entre 18 ° y25 ° C. El desove es estacional en altas latitudes subtropicales (4-6meses), cerca de 9-10 meses en los trópicos y prácticamente continuaen las regiones ecuatoriales, donde las temperaturas se mantienen durante todo el año por encima depor lo menos 24 ° C (Webb y Maughan, 2007). 3.2.4. Rangos de tolerancia ambiental Pueden sobrevivir a temperaturas altas y bajas, alta salinidad, bajas concentraciones de oxígeno disuelto y pH en diferentes rangos. 3.3. Oreochromis aureus Se le conoce comúnmente como la Tilapia azul. Puede mostrar unas barras verticales oscuras y claras, alternadas en la mitad posterior de la aleta dorsal. Presenta generalmente un iris rojo en sus ojos. Alcanzan una longitud máxima de 37 cm, determinada por las condiciones ambientales. Es muy similar que los otras especies de tilapia, por lo que puede presentar confusiones en su diferenciación. Presenta 12-15 radios dorsales.
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Imagen 6.- Oreochromis aureus (ERDC, 2007).
3.3.1. Alimentación Puede ser capaz de cambiar los hábitos de alimentación depende de las fuentes de alimentos disponibles imagen. En un análisis estomacal en una hembra adulta (15-22 cm), re encontró que la dieta consistía principalmente de fitoplancton.Otros productos alimenticios de menor importancia incluyen protozoos, Annelida, Formicidae, rotíferos, nematodos, oligoquetos, Trichoptera, Cladócera, Copépoda, ostrácodos, Díptera, restos inorgánicos, y huevos no identificados. 3.3.2. Reproducción Distribuida naturalmente puede alcanzar la madurez sexual en el segundo año de vida aunque este dato puede variar. La talla del primer desove en el hábitat nativo es de 18-20 cm. Se ha reportado que algunos ejemplares hembra, comienzan a desarrollar los ovarios a los 50 días de edad, con tan solo 10 cm de longitud. 3.3.3. Rangos de tolerancia ambiental Es un pez muy resistente a diferentes enfermedades, condiciones ambientales y consume de una gran variedad de alimentos. Se ha reportado que toleran bajas temperaturas y bajas concentraciones de oxígeno. Cuando el oxígeno disuelto en el agua esta cerca de cero, es capaz de utilizar aire atmosférico, sacando su boca fuera de la superficie del agua (ERDC, 2007).
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3.4. La tilapia roja Oreochromis spp. El desarrollo de este híbrido permitió obtener muchas ventajas sobre otras especies, como alto porcentaje de masa muscular, filete grande, ausencia de espinas intramusculares, crecimiento rápido, adaptabilidad al ambiente, resistencia a enfermedades, excelente textura y coloración de carne, con muy buena aceptación en el mercado (Nicovita, alicorp, 2002). Según Toledo y García (2000), se cree que las siguientes sean las variedades hoy en día cultivadas: - Red Florida (O. mossambicus x O. urolepsis hornorum) - Red aurea (Red florida x o. aureus) - Red Filipina y Singapur (O. mossambicus roja y albina) - Red Taiwan (O. mossambicus albina x O. niloticus) - Red Yumbo (Red Florida x O. niloticus) - Red ACC-1 (Red Florida x O. niloticus x O. aureus) Según Castillo (2006), la Tilapia Roja, se convirtió en la punta de lanza para el desarrollo acelerado de la piscicultura comercial a partir de la década de los 80 en países sin tradición acuícola suramericanos como: Colombia (introducida en 1982), Venezuela (introducida en 1989) y Ecuador (introducida en 1993) en forma casi simultanea con países Centroamericanos, Caribeños y Norteamericanos. La atractiva coloración estimuló a los productores e investigadores a iniciar un acelerado e incontrolado programa de hibridación que permitió la obtención de nuevas líneas de tilapia roja, las más populares, y que han sido introducidas en diferentes puntos de América, son:
Red Singapur: O. mossambicus Mutante.
Red Florida: O. mossambicus ALBINA x O. urolepis hornorum.
Red Stirling y Tailandesa: O. niloticus ROJA.
Red Manzala: O. aureus ROJA., O. niloticus (Egipcia) Roja.
Red Yumbo No 1: Red Florida x O. niloticus.
Red Yumbo No 2: Red Florida USA x Red Florida ISRAEL.
Red Taiwanesa: O. mossambicus ALBINA.
Red Taiwanesa y Filipina: O. mossambicus ALBINA x O. niloticus.
Red Aurea: O. aureus ROJA.
Golden Tilapia: O. mossambicus AMARILLA.
Otras variedades no rojas de importancia introducidas son:
Nilótica Perla: O. niloticus PEARLS.
NilóticaChitralada: O. niloticus Tailandesa. 16
Imagen 7.- A la Izquierda tilapia gris (Oreochromis niloticus), a la derecha el híbrido, la tilapia roja (Orechromis spp.) (Castillo, 2006).
4. PARAMETROS FÍSICOS, QUÍMICOS Y BIOLÓGICOS A CONSIDERAR EN EL CULTIVO DE TILAPIA Para el cultivo de la tilapia es importante conocer la influencia de los factores físico-químicos en la calidad del agua y el crecimiento de los peces. Algunos factores como el oxígeno disuelto, el pH y la temperatura son determinantes en el cultivo de tilapia. 4.1. Oxígeno Dentro de los parámetros físico-químicos, es el más importante en el cultivo de especies acuáticas. El grado de saturación del oxígeno disuelto es inversamente proporcional a la altitud y directamente proporcional a la temperatura y pH. Oxígeno (ppm) 0 – 0.3 0.3 – 2.0 3.0 – 4.0 >4.5
Efectos Los peces pequeños sobreviven en cortos períodos Letal a exposiciones prolongadas Los peces sobreviven, pero crecen lentamente Rango deseable para el crecimiento del pez
Cuadro 1.- Efectos de las diferentes concentraciones de oxígeno disuelto en el agua, expresado en partes por millón.
4.1.1 Factores que disminuyen el nivel de oxígeno disuelto - ) Descomposición de la materia orgánica. - ) Alimento no consumido. - ) Heces. - ) Animales muertos. 17
- ) Aumento de la tasa metabólica por el incremento en la temperatura (variación de la temperatura del día con respecto a la noche). - ) Respiración del plancton (organismos microscópicos vegetales y animales que forman la cadena de productividad primaria y secundaria). - ) Desgasificación: salida del oxígeno del agua hacia la atmósfera. - ) Nubosidad: en días opacos las algas no producen suficiente oxígeno. - ) Aumento de sólidos en suspensión: residuos de sedimentos en el agua, heces, etc. - ) Densidad de siembra. 4.1.2. Tipos de aireación. Natural: caídas de agua, escaleras, chorros, cascadas, sistemas de abanico. Mecánica: Motobombas, difusores, aireadores de paletas, aireadores de inyección de O, generadores de oxígeno líquido. 4.2.Temperatura Los peces son animales poiquilotermos (su temperatura corporal depende de la temperatura del medio) y altamente termófilos (dependientes y sensibles a los cambios de la temperatura) (figura 4).El rango óptimo de temperatura para el cultivo de tilapias fluctúa entre 28º C y 32º C, aunque ésta puede continuarse con una variación de hasta 5° C por debajo de este rango óptimo (Cuadro 5).
Figura 2.- Efectos del crecimiento de la tilapia por la temperatura.
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4.3. Dureza del agua Es la medida de la concentración de los iones de Ca y Mg expresados en ppm de su equivalente a Carbonato de calcio. Existen aguas blandas (< 100 ppm) y aguas duras (>100 ppm). Rangos óptimos: entre 50-350 ppm de CaCO3. Por estar relacionada directamente con la dureza, el agua para el cultivo debe tener una alcalinidad entre 100 ppm a 200 ppm. Durezas por debajo de 20 ppm ocasionan problemas en el porcentaje de fecundidad [se controlan adicionando carbonato de calcio (CaCO), o cloruro de calcio (CaCl)]. Durezas por encima de 350 ppm se controlan con el empleo de zeolita en forma de arcilla en polvo, adicionada al sistema de filtración.
4.4. pH Es la concentración de iones de hidrógeno en el agua (figura 5).El rango óptimo está entre 6.5 a 9.0. Valores por encima o por debajo, causan cambios de comportamiento en los peces como letárgia, inapetencia, retardan el crecimiento y retrasan la reproducción (cuadro 5).
Figura 3.- Escala de pH.
4.5. Nitritos Son un parámetro de vital importancia por su gran toxicidad y por ser un poderoso agente contaminante. Se generan en el proceso de transformación del amoníaco a nitratos. La toxicidad de los nitritos depende de la cantidad de cloruros, temperatura y concentración de oxígeno en el agua.Es necesario 19
mantener la concentración por debajo de 0.1 ppm, haciendo recambios fuertes, limitando la alimentación y evitando concentraciones altas de amonio en el agua (cuadro 5). 4.6. Dióxido de carbono Es un producto de la actividad biológica y metabólica, su concentración depende de la fotosíntesis. Debe mantenerse en un nivel inferior a 20 ppm, porque cuando sobrepasa este valor se presenta letargia e inapetencia (Nicovita, alicorp, 2002). (Cuadro 5). 4.7.Amoniaco El amoníaco es más tóxico a altas temperaturas (más a 32, que a 24º C, por ejemplo). La disminución del oxígeno disuelto también aumenta la toxicidad del amoníaco, disminuyendo el apetito y el crecimiento en los peces, a concentraciones tan bajas como 0,08 mg/l. En cuanto a los niveles depredación (especialmente por pájaros) las líneas de tilapias rojas y blancas son las más susceptibles a sus ataques. CARACTERÍSTICAS Temperatura
Oxígeno Disuelto pH Bióxido de Carbono Dureza Turbidez Transparencia Secchi H-Nh3 (amonio)
REQUERIMIENTOS Máxima: 34-36 ºC Óptima: 28-32 ºC Mínima: 14 ºC Óptimo: > 3.5 ppm Mínimo: 2 ppm Óptimo: 6.5- 8 Óptimo: 90 o 95%) -Reversión sexual de las crías mediante hormonas suministradas oralmente. El cultivo de poblaciones monosexadas de machos elimina las restricciones sobre la duración del período de engorda y por lo tanto de la edad (USAID etal, 2008). 5.5. Siembra Es importante tener en cuenta para la siembra de semilla los siguientes aspectos:
Conteo preciso de una muestra o del total de la semilla (volumétrico, por pesoomanual, es decir conteo individuo por individuo). Aclimatación de temperatura:el agua de las bolsas de transporte de alevinesse debemezclar por lomenos durante 30minutos con el agua del estanqueque se va a sembrar.
5.6. Precría Esta fase comprende la crianza de alevines con pesos entre 1 a 5 gramos. Generalmente, se realiza en estanques con área entre 350 y 800m², con densidad de 100 a 150 peces porm², buen porcentaje de recambio de agua (del 10 al 15% día) y con aireación, mientras que para esta misma fase pero sin aireación, se sugiere densidades de 50 a 60 peces por m² y recubrimiento total del estanque con malla anti-pájaros para controlar la depredación. Los alevines son alimentados con alimento balanceado conteniendo 45% de proteína, a razón de 10 a12%de la biomasa distribuido entre 8 a 10 veces al día (Nicovita, 2002).
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5.7. Levante Esta comprendido entre los 5 y 80 gramos. Generalmente se realiza en estanques de 450 a 1500 m², con densidad de 20 a 50 peces por m², buen porcentaje de recambio de agua (5 a 10% día) y recubrimiento total de malla para controlar la depredación.Los peces son alimentados con alimento balanceado cuyo contenido enproteína es de 30 o 32%, dependiendo de la temperatura y el manejo de la explotación.Se debe suministrar la cantidad de alimento equivalente del 3% al 6% de la biomasa, distribuidos entre 4 y 6 raciones al día (Nicovita, 2002). 5.8. Engorde Está fase comprende la crianza de la tilapia desde entre los 80 gramos hasta el peso de cosecha. Generalmente se realiza en estanques de 1000 a 5000 m², con densidades entre 1 a 30 peces porm².En densidades mayores de 12 animales por m², es necesario contar con sistemas de aireación o con alto porcentaje de recambio de agua (40 a 50%). En esta etapa, por el tamaño del animal, ya no es necesario el uso de sistemas de protección anti-pájaros. Los peces son alimentados con concentrados de 30 o 28% decontenido de proteína, dependiendo de la clase de cultivo (extensivo, semi-intensivo o intensivo), temperatura del agua y manejo de la explotación. Se sugiere suministrar entre el 1.2%y el 3%de la biomasa distribuida entre 2 y 4 dosis al día (Nicovita, 2002). 5.9. Aspectos importantes sobre el alimento
El alimento representa entre el50%y el60%de los costos de producción. Un alimentomalmanejado se convierte en el fertilizantemás caro. Un programa inadecuado de alimentación disminuye la rentabilidad del negocio. Una producciónsemi-intensiva e intensiva depende directamente del alimento. Elmanejo de las cantidades y los tipos de alimento asuministrar deben sercontrolados y evaluados periódicamente para evitar los costos excesivos. El sabor del animal depende de la alimentación suministrada.La subalimentaciónhace que el animal busque alimento del fondo y su carne adquiera un sabor dedesagradable (Nicovita, 2002).
5.9.1. Forma de alimentar Las formas de alimentación dependen directamente del manejo, el tipo de explotación, la edad y los hábitos de la especie.Entre lasmáscomunes tenemos:
Alimentación en un solo sitio:Es una de las formasmenos convenientes de alimentapor la acumulación demateria orgánica en un solo lugar y la dificultad para que comatoda la población de peces que constituyen el 34
lote, lo que hace que gran parte delalimento sea consumido solamente por los más grandes y se incremente elporcentaje de peces pequeños. Este tipo de alimentación en un solo sitio, esaltamente eficiente en sistemas intensivos (300 a 500 peces m²).La alimentación en una sola orilla es un sistema adecuado para animales de 1 a 50 gramos, ya que no les exige una gran actividad de nado y permite realizar una alimentaciónhomogéneay eficiente.
Alimentación en "L". (dos orillas del estanque). Este sistema de alimentación essugerido para animales de 50 a 100 gramos, el cual se realiza en dos orillascontinuas del estanque. Lo más recomendable es alimentar en la orilla de salida(desagüe) y en uno de los dos lados, con el fin de sacar la mayor cantidad de hecesen elmomento de la alimentación.
Alimentación periférica:Se realiza por todas las orillas del estanque y se recomiendapara peces mayores a 100 gramos, dado que por encima de este peso se acentúanlos instintos territoriales de estos animales, en varios sitios del estanque (nicovita, 2012).
5.9.2.Determinación de la ración alimenticia La alimentación de las larvas de tilapia, en sus primeros días de vida, está garantizada por los nutrientes contenidos en el saco vitelino. Una vez la larva absorbe del 60-75% del saco vitelino, esta presenta mayor actividad y por lo tanto, se debe comenzar a suministrar el alimento. En el primer mes, se administra alimento para tilapia que contiene un nivel de proteína del 45%. Luego, durante 15 días, se aplica el 40% de proteínas. Otros 30 días se aplica el 35% de proteínas; mientras otros 45 días se suministra el 32% de proteínas y el 28% en el engorde final (Hsien-Tsang y Quintanilla, 2008). La cantidad de alimento a proporcionar, se calcula realizando muestreos de siembra cada 14 días. Para ello se pesa un 1% - 5% de la siembra total.Se verifica el crecimiento logrado por día y el factor de conversión alimenticia y así determinar el costo de producción. Por ejemplo, en un estanque con un área de 2,000 m², si se siembran 4 alevines / m², el total de siembra es 8,000 alevines. Considerando el tamaño de muestra del 1%, el número a pesar es de 80 alevines. Si el peso promedio de siembra es de 2 gramos, equivale 16,000 gramos, igual que 35.24 libras de biomasa. Si se aplica el 15% de la tabla, son 5.28 libras de alimento que debe ser aplicado en 4 raciones / día. Es decir, 1.32 libra / ración (tabla 1).
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Peso ( g )
Edad (semanas)
1-10 11-35 36-75 76-125 126-180 181-230 231-260 261-290 291-345
2 4 6 8 10 12 14 16 18
Porcentaje de alimento ( % ) 15.0 10.0 5.0 3.5 2.8 2.5 2.3 2.0 1.8
Tabla 1.- Alimentación recomendada para cultivos intensivos y semi-intensivos en estanques (Hsien-Tsang y Quintanilla, 2008).
El éxito de la actividad acuícola depende de la eficiencia en el cultivo, principalmente del manejo del alimento y técnicas de alimentación considerando la calidad y cantidad del alimento suministrado. La tilapia es omnívora y su requerimiento y tipo de alimento varían con la edad del pez. Durante la fase juvenil pueden alimentarse tanto de fitoplancton, zooplancton así como pequeños crustáceos.
5.10. Fertilización Las fertilizaciones producen un aumento en la producción de peces y son practicadas en todo el mundo. En China, es una tradición bien conocida y en ese país, utilizan abonos de animales como fuente de nutrientes para sus policultivos de carpas. El uso de abonos inorgánicos (urea, superfosfato, etc.) fue introducido más recientemente en la región templada. Existe una abundante bibliografía acerca de las fertilizaciones en estanques (tipos de fertilizantes, tasas, métodos y frecuencias de aplicación). El objetivo es promover el crecimiento y desarrollo de las presas de zooplancton, del tamaño y especiescorrectas para la alimentación de larvas o alevines. Con el fin de estimular el crecimiento del fitoplancton se requiere un gran número de nutrientes. Entre estos, los más importantes son: el C, N, K, Si, Ca, P, Mg, S, Cl y trazas de Fe, Mn, Zn, B, Cu, Mo y Co. Parte de la concentración de estos elementos en el agua, provienen del aire, el suelo, la fuente de agua utilizada y las lluvias; y se encuentranpresentes en cantidades limitadas, especialmente en aquellos más importantes. Para mantener una adecuada producción de fitoplancton como alimento natural que soportela producción de peces a obtener, se requiere una fertilización que agregue nutrientes decarácter orgánico e inorgánico. En la práctica, la fertilización óptima es un tema complejo, debido a la dinámica y a los factores intrínsecos y extrínsecos que actúan sobre el ecosistema del estanque. Debido a los diferentes requerimientos manifestados por las diferentes algas, se necesitará alcanzar un abastecimiento balanceado de nutrientes (Egna y Boyd, 1997).
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En condiciones óptimas de crecimiento, la composición promedio de los nutrientes en el fitoplancton es aproximadamente del 45-50% de C; 8-10% de N y un 1 % de P (tasa de 50:10:1). La cantidad de nitrógeno que entra naturalmente al sistema de estanques, essuficiente para mantener la productividad primaria y se considera innecesaria una fertilización (para bajos niveles de producción de peces).Por el contrario, el P está limitado en muchas aguas naturales y su cantidad dependerádel abastecimiento surgido a partir de las rocas. Por otra parte, la disponibilidad de P disuelto se encuentra restringida debido a su rápida reacción con otros componentes (Fe, Ca, Mg y Al) con los que forma precipitados relativamente insolubles, que no se estarán disponibles. También el P de la columna de agua es captado por los barros que lo adsorben fuertemente (en correlación a la cantidad de arcilla existente). Por ello, la cantidad de P necesario para una fertilización, dependerá de los fondos y tipo de suelos, etc. Esto significa que la proporción de N2 a P5 es muy variable, dependiendo además de la historia previa del fertilizado de los estanques (saturación en fósforo) (Egna y Boyd, 1997). El programa de fertilización de los estanques, debe tener en consideración los costos de los mismos. Por ejemplo, un simple grado de fertilización (con urea y triple fosfato) puede ser más efectivo en cuanto a costos, que otras mezclas. Muchas veces, el productor obtiene facilidad para disponer de abono originado en las granjas avícolas, especialmente cuando se trata de pequeños acuicultores y puedenreemplazar con ello los otros materiales más costosos. La aplicación de abonos en losestanques dependerá también de la aceptabilidad social y cultural. Esta aplicación es muy empleada en muchos países de Oriente y América Latina. 5.10.1. Fertilizante Químico Los fertilizantes utilizados en cultivo de peces son análogos a los usados en la agricultura y su disponibilidad y variedad dependerá de lo empleado en cada región. A semejanza de los empleados en las producciones agrícolas, incluyen nutrientes como el P, N y K en diferentes proporciones. Los fertilizantes utilizados en los estanques para producción de peces, excluyen el K (potasio). Este último material ha sido poco investigado en relación a sus acciones, pero debido a algunas experiencias, se tiene conocimiento de que el K no es efectivo. Los fertilizantes se venden, en general, enforma granulada. Su solubilidad es importante en la fertilización, porque el fitoplancton capta los nutrientes principalmente del agua, en forma de iones disueltos. Los granulados de fósforo son considerablemente más lentos en disolverse que los de N. El nutriente que se pierde, es captado por los suelos del fondo. Algunos tipos de fertilizantes líquidos, han demostrado ser más efectivos. Se puede mejorar la solubilidadpulverizando los gránulos. También se pueden suspender en la columna de agua,dejándolos durante meses, reduciendo así la aplicación semanal, con iguales resultados. Existen abundantes resultados sobre experiencias llevadas a cabo por diferentes investigadores, acerca de las proporciones de fertilizantes empleados con el objeto del aumento de la producción de los peces (Egna y Boyd, 1997).
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5.10.2. Abonos Animales La fertilización con estos abonos estimula la producción de las comunidades formadas por bacterias, fitoplancton, zooplancton y bentos. Para maximizar la producción de peces, basada en los organismos disponibles en los estanques, se practica comúnmente el policultivo, con una variedad de peces que se alimentan de diferentes nichos (por ejemplo, las varias variedades de carpas chinas o hindúes). Obviamente, las ventajas de usar abonos de animales como fuente de nutrientes para el cultivo de peces es que a) son prácticamente de bajo costo; b) fácilmente disponibles en el campo; c) deseables para una variedad de peces en policultivo. También existen una serie de aspectos negativos debidos a su uso: a) objeción estética y sanitaria para peces producidos con estos abonos, b) consumo en tiempo para su recolección, c) calidad no predecible de nutrientes y alta DBO (Demanda Biológica de Oxígeno), que puede causar una disminución o ausencia de oxígeno en los estanques, si se los aplica en grandes dosis y finalmente d) no son posibles de usar cuando se trata de cultivos en sistemas de tipo intensivo. Es importante conocer que los abonos orgánicos (abonos de animales) constituyen materiales que se descomponen y para ello, utilizan OD del agua, de ahí la disminución de esta variable, que puede afectar a los peces bajo cultivo (Egna y Boyd, 1997). 5.10.3. Composición del abono animal Existe una variedad de estos abonos que son utilizados para la producción de peces. La tasa de N2 y P5 en muchos de estos abonos animales, se presenta en forma constante y cercana a 2; pero el N2 en el orín de los animales, es marcadamente más elevado que en sus heces. Las heces de las aves, contienen relativamente alto contenido en N2 y P5, más que en otros animales rumiantes (vacas y otros animales del ganado). En general, la humedad y el contenido de nutrientes en los abonos varían considerablemente, dependiendo de varios factores como las dietas empleadas en la alimentación de los animales, la pureza y tratamiento previo del abono y la duración y tiempo de su almacenamiento; así como las condiciones de este último. Por ejemplo, el abono fresco de aves naturales (guano), contiene más del doble de N2 que el abono de granjas y es más rico en P5. El ácido úrico en el abono fresco, se descompone rápidamente debido a los microorganismos existentes, desprendiendo amoníaco, que se pierde fácilmente, una vez que el abono se encuentra expuesto al aire. La calidad de los abonos dependerá de su composición, ya que ellos muchas veces se presentan mezclados con abono en descomposición, residuos vegetales, aserrín y cal. Enmuchos casos, el abono contiene también apreciable cantidad de desperdicios dealimento que contribuye indirectamente a la dieta de los peces cuando se fertilizan los estanques. Esto ocurre especialmente, al utilizar abonos de granjas avícolas.
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5.10.4. Aplicación de fertilizantes Gran cantidad de fertilizantes orgánicos se pueden encontrar en el país, provenientes de diferentes agropecuarias y granjas avícolas, de vacas, porcinos, etc., lo importante es elegir el mejor en cuanto los aspectos económicos, disponibilidad y calidad. A continuación se describe una tabla de aplicación con diferentes tipos de fertilizantes orgánicos y químicos: Tipo de fertilizante Orgánico
Orgánico
Orgánico
Químico
Nombre
Área m²
Cantidad Libra/semana Gallinaza 250 13.2 500 26.2 1000 52.8 Estiércol fresco de 250 17.6 Vaca 500 35.2 1000 70.4 Estiércol de Cerdo 250 15.0 500 30.0 1000 60 Urea 250 1.69 500 3.38 1000 6.76 Tabla 2.- Aplicación semanal de fertilizantes en estanques.
*) Es importante recordar que la aplicación de fertilizantes debe ser suspendida en caso de tener el rango óptimo, medido con el brazo o disco Secchi. En caso de una excesiva fertilización hacer fuertes recambios de agua hasta obtener el rango deseado. 5.10.5. Problemas de oxígeno causados por fertilizantes orgánicos La reducción en la concentración del oxígeno disuelto en el agua ocurre frecuentementedespués que se agregan grandes cantidades de estiércol a intervalos irregulares. Este es el problema más serio en el uso de fertilizantes orgánicos. El abono consume el oxígeno mientras se descompone en el agua.Cuando la concentración de oxígeno disuelto es baja, los peces suben a la superficie delagua y parecen que tragaran aire ("boqueando"). Los peces tratan de respirar. Esto sería similar a una persona que ha estado respirando por mucho tiempo bajo una cámara cubierta. Al agotarse el oxígeno dentro de la cámara ésta debe ser abierta para permitir la entrada de aire fresco. La disminución en la concentración del oxígeno disuelto en el agua de estanques (baja deoxígeno) ocurre generalmente por la noche, alcanzando su nivel más bajo antes del amanecer debido a que el fitoplancton no ha producido oxígeno durante la noche. La baja de oxígeno puede también convertirse en un problema serio cuando el plancton es abundante y laslecturas del disco "Secchi" son menores de 20 cm. La baja de oxígeno puede matar a los peces. La cantidad de peces que mueren cada día puedeser utilizada como un indicativo del tipo de problema que ocurre en el estanque en un momento dado. Cuando sólo mueren pocos peces cada día, el problema puede ser una enfermedad; mientras cuando mueren grandes cantidades de peces durante la noche, probablemente la causa es la baja de oxígeno. Aunque los peces no 39
mueran por poco oxígeno,se debilitan y están propensos a enfermarse (Bocek, 2003c).
Figura 10.- Estanque con baja concentración de oxígeno disuelto (Bocek, 2003c).
5.10.6. Reglas para la aplicación de fertilizantes orgánicos 1) La primera aplicación debe hacerse preferiblemente dos semanas antes de la siembra de lospeces para aumentar la abundancia de alimento natural. Cuando se usa estiércol de ganadoestabulado, coloque a los animales en sus corrales y comience a alimentarlos dos semanasantes de la siembra. Esto es especialmente necesario cuando el estanque no ha sido fertilizadoantes. 2) No sobre-fertilice. El estiércol o abono debe ser aplicado a los estanques para mantener lacantidad de plancton bajo los límites recomendados. 3) Evite agregar dosis altas de estiércol a intervalos irregulares. Mantenga una rutina defertilización basada en observaciones de la calidad del agua. Esto permite una lentadescomposición del estiércol y evita el agotamiento del oxígeno disuelto en el agua. 4) Los fertilizantes orgánicos se pueden usar en combinación con los fertilizantes químicos. Si el estanque está lodoso, agregue primero el estiércol para precipitar las partículas que lo enturbian. Esto mejorará la efectividad de los fertilizantes químicos permitiéndoles incrementar la abundancia del fitoplancton. 5) Mantenga las lecturas del disco Secchi entre 20 y 30 cm y revise el estanque antes del amanecer para detectar los problemas de oxígeno disuelto. Mantenga agua fresca disponible para agregarle a un estanque en caso que ocurra una
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baja de oxígeno. Suspenda o reduzca la fertilización hasta que el problema de la baja de oxígeno se corrija. 6) Recuerde que muchos fertilizantes orgánicos también son consumidos por los peces. Para evitar crear problemas con el oxigeno disuelto las cantidades semanales de estiércol pueden ser divididas en dosis menores aplicándolas diariamente durante la mañana. 5.10.7. Disco Secchi Es un disco circular que mide aproximadamente 20 cm de diámetro, y que se usa para medir la abundancia de plancton en el agua.La forma de usarlo es como sigue:
Las mediciones se harán siempre desde la superficie de la masa del agua y nunca desde puentes, presas o azudes. A sotavento y en el lado de sombra se introduce al disco de Secchi atada a una cuerda y una gaza graduada. Se anota la profundidad que el disco alcanza hasta que se pierde de vista. Los pasos 2 y 3 se repiten al menos en 3 ocasiones y se anotan las tres mediciones de las cuales es posible obtener una media con la que trabajar en los posteriores análisis.
Esto proporciona una estimación de la penetración luminosa en el agua. A partir de esta variable se pueden conocer otros parámetros, como la profundidad de compensación (aproximadamente 2,5 veces la profundidad de visión del disco de Secchi), la turbidez del agua, la zonafótica o la extinción luminosa (Imagen 14, figura 16).
Figura 11.- Partes y estructura de un disco Secchi típico.
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Imagen 10.- Midiendo la transparencia del agua con disco Secchi.
5.11. Alcalinidad y encalado Además de nutrientes, la producción de fitoplancton requiere adecuada cantidad de Carbono derivado de los procesos y del CO2 atmosférico o bien del Carbono aportado por las rocas y los suelos a través del agua. La alcalinidad del agua se refiere a su contenido en CO2 libre, carbonatos y bicarbonatos y su concentración indicará la reserva de carbono inorgánico y la disponibilidad de CO2 para la realización de la fotosíntesis por las algas especialmente. En estanques fertilizados y productivos, que contengan peces, la alcalinidad debe ser mayor a 20 mg/L en aquellos situados en clima templado y se verifica una mayor concentración para los estanques que efectúan una alta producción de Tilapia en los trópicos. Cuando el agua posee baja alcalinidad, la práctica más común utilizada para su mejoramiento, es la de encalado. Los materiales más utilizados, son: el Oxido de Calcio (cal viva), la cal hidratada (hidróxido) y la cal agrícola o dolomita (Carbonato de Calcio y Magnesio). Su eficiencia dependerá del tipo de material, granulometría y valor neutralizante. Los tratamientos con abonos de animales aumentan la alcalinidad, especialmentecuando se emplea abono de granjas avícolas, a diferentes tasas de aplicación. 5.12. Principales enfermedades y buenas prácticas de manejo sanitario de la Tilapia La “Enfermedad” es una condición anormal del pez, que se caracteriza por el debilitamiento gradual y la incapacidad, para poder mantener las condiciones 42
fisiológicas normales, perdiendo su capacidad para mantenerse en el medio ambiente. Las buenas prácticas de manejo sanitario deben tener como objetivo primordial mantener y/o mejorar la salud de los peces para obtener el óptimo desarrollo y reproducción en el tiempo mínimo recomendable, lo cual es importante para conseguir la tasa de crecimiento señalada para la especie. En Sanidad Acuícola, el proceso o estado de enfermedad de un organismo acuático se reconoce por la aparición de anomalías en su comportamiento y/o la integridad corporal (lesiones), que trae como consecuencia un descenso en los rendimientos y frecuentemente la muerte de los organismos afectados. Generalmente este conjunto de anomalías, no es especifico para un determinado agente etiológico (causante), por lo que recibe el nombre de “síndrome”. Ahora bien, la forma en que se manifiestan los agentes patógenos depende fundamentalmente de 1) la especie o variedad del pez debido a la susceptibilidad típica, 2) patogenicidad del agente infeccioso, 3) influencia del medio ambiente (calidad del agua), 4) calidad del alimento y 5) manejo biotecnológico de los peces (SAGARPA, 2012). Las enfermedades aparecen solo si no se siguen las condiciones de manejo que requiere la tilapia. Estos peces incluso, son tan eficientes para la piscicultura que pueden tolerar condiciones extremas durante un cierto periodo de tiempo sin sufrir daños graves. 5.12.1. Septicemia causada por pseudomonas Lasepticemia por Pseudomonas también llamada Bacteriemia hemorrágica, Septicemia hemorrágica bacteriana o Septicemia hemorrágica puede ocurrir en peces de cultivo o de acuarios y generalmente se presenta cuando los peces se estresan por factores, tales como bajas concentraciones de oxígeno disuelto en el agua, temperaturas elevadas, alimentación deficiente, sobrepoblación de peces o mal manejo de los mismos. Es una enfermedad de distribución mundial. En México se tienen registros en la mayoría de las UPAs. Cuadro clínico: Los signos externos son similares a las que causan las bacterias del género Aeromonas. Generalmente se presentan manchas rojas en la base de las aletas, en la boca, en la parte inferior del cuerpo y alrededor del ano; como una septicemia generalizada. Diagnóstico: El diagnóstico de una septicemia causada por pseudomonas es muy fácil de confundirlo con el de la enfermedad causada por los géneros aeromonas o vibrio. Por lo tanto, es necesario realizar un cultivo de la piel u órganos afectados en el laboratorio Prevención y control: Tomando en cuenta que las infecciones causadas por Pseudomonas generalmente están relacionadas con condiciones ambientales 43
desfavorables; es recomendable mejorar la calidad del agua y vigilar todos aquellos factores que puedan causar estrés en los peces (SAGARPA, 2012). 5.12.2. Enfermedades Dactylogyrosis
causadas
por
parásitos:
Gyrodactylosis
y
Cuadro clínico: Los síntomas clínicos son más característicos de la Gyrodactylosis y Dactylogyrosis son irritación y hemorragias así como erosión de tejido branquial; los peces se frotan en las orillas del estanque con movimientos rápidos y repentinos y cuando son numerosos causan serios daños en las branquias. Diagnóstico: Es parásito de agallas y es identificado por la presencia de cuatro manchas oculares. Prevención y control: Los peces infectados se tratan aplicando formol al 17-250 ppm por 1 hora o permanganato de potasio al cuerpo de agua (bajo la observación y recomendación de un técnico), pero la mejor forma de prevención es no introducir peces infectados en el agua. Medidas profilácticas: La mejor medida profiláctica para mantener a los peces saludables y en buen crecimiento es la higiene, incluyendo la calidad del agua(SAGARPA, 2012). 5.12.3.Desinfección de las instalaciones y equipo La desinfección es una táctica empleada para reducir o eliminar agentes patógenos. Para desinfectar las instalaciones se recomienda lo siguiente: 1) Eliminar, previamente a la desinfección, la mayor cantidad de materia orgánica posible pues esta neutraliza algunos agentes desinfectantes que contienen cloro como principio activo. 2) La desinfección puede realizarse por fases, o sea desinfectar una parte de la piscifactoría mientras otras se encuentran en producción; otra forma es desinfectar todas las instalaciones en la misma oportunidad. 3) La desinfección puede llevarse a cabo utilizando hipoclorito de calcio o sodio. En este caso se inundan las instalaciones por 24 horas con 200 ppm de substancia química (seguir los consejos del técnico de la granja)(SAGARPA, 2012). 5.13. Buenas prácticas de cosecha Manipular correctamente a los peces, antes y durante la cosecha es de suma importancia para mantener la calidad, inocuidad y valor del producto. Uno de los objetivos en la producción de tilapia, es generar un producto de alta calidad que satisfaga los requerimientos del comprador y del consumidor. 44
Figura 12.- Cosecha con trasmallo (SAGARPA, 2012).
Es común que el valor del producto se vea afectado negativamente por resultar dañado por el mal manejo antes, durante y posterior a la cosecha, por lo que es de suma importancia atender con profesionalismo todas aquellas actividades para mantener la calidad del producto cuando se realiza esta actividad. Consideraciones para prevenir y reducir los niveles de contaminación química o biológica durante la cosecha se deberán tener en cuenta los aspectos siguientes: Las instalaciones, materiales e instrumentos utilizados para la manipulación de los peces deberán mantenerse limpios, desinfectados y en buen estado. Antes del inicio y al final de la jornada laboral, se limpiarán adecuadamente los materiales e instrumentos. Para la cosecha es recomendable utilizar materiales no-corrosivos, no-tóxicos, lisos, impermeables, de fácil limpieza y desinfección. Antes de la cosecha es conveniente seguir las siguientes recomendaciones: Suspender la alimentación por lo menos 24 horas antes. Preparar el equipo requerido para captura, manipulación y traslado de peces. Redes desinfectadas. Cucharas libres de cualquier sustancia tóxica. Contenedores (cajas de plástico, cubetas, etc.). Equipo de aireación (Blower con manguera de distribución de aire y difusores y/o aireador tipo fuente). Vehículo y transportador para peces debidamente equipado (aireador portátil y/o tanque de oxígeno con manguera de distribución de aire u oxígeno y difusores)(SAGARPA, 2012).
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5.13.1. Cosecha para depuración de peces Durante la cosecha, es recomendable seguir los pasos siguientes:
Iniciar lo más temprano posible. Realizar el arrastre con mesura, con el fin de impedir el escape de ejemplares y alterarlos lo menos posible. Suministrar aire constantemente durante la selección y extracción de peces. Manipular con mucho cuidado y lo menos posible a los peces para evitar que se estresen, se rosen o golpeen y pierdan escamas. Determinar el peso promedio de los peces, el número total de peces cosechados y la biomasa total cosechada. Transferir los peces cosechados a un estanque para sudepuración (SAGARPA, 2012).
5.13.2. Equipo de Transporte El vehículo en el que se transportarán los peces, deberá estar en buenas condiciones mecánicas, eléctricas, etc., lo cual deberá ser verificado por el responsable de manera anticipada a efecto de realizar la actividad sin contratiempos. El o los transportadores a utilizar deberán estar previamente lavados y desinfectados, revisados que no tengan daños físicos que pudieran presentar fugas de agua o poner en riesgo los peces transportados(SAGARPA, 2012). 5.13.3. Cosecha para sacrificio del producto fresco Para mantener la inocuidad del producto, es necesario aplicar protocolos que cumplan con la normatividad sanitaria. Así no se pondrá en riesgo la calidad del producto y la salud del consumidor. 5.13.4. Características del agua para el procesamiento Una vez que la tilapia ha sido sacrificada, puede ser eviscerada o no, en ambos casos debe ser lavada con agua con algún sanitizante permitido y enfriada en agua con hielo y sal (aproximadamente un 10%). Ya fría se empaca en una caja térmica poniendo una capa de hielo encima una de pescado, otra de hielo, otra de pescado y así sucesivamente, la última capa deberá ser de hielo, no dejando observar ninguna parte de los peces, se tapa la caja y se coloca en refrigeración o en un lugar fresco. Se trasladan las cajas en vehículo con sistema de refrigeración. Lo importante es mantener la cadena de frío del producto hasta que llegue al consumidor final(SAGARPA, 2012). 46
6.- PRODUCCIÓN DE ALEVINES
6.1. Cultivo de reproductores Para obtener una buena producción de larvas se recomienda emplear una proporción de 1.5 a 2machos por 3 hembras, sin exceder 1.0 Kg de biomasa por metro cuadrado, ya que en el exceso tanto en biomasa como en el número de reproductorespuede provocar disminución de la postura. Es necesario tener un plantel de reproductores de reemplazo para ponerlos a producirmientras los otros se encuentran en período de descanso. Alcanzar más de 200 a 300 alevines efectivos por hembra/ciclo es difícil y requiere unmanejomuy selectivo (trabajo genético eficiente en los parentales) (Nicovita, 2002). 6.2. Selección de reproductores Se seleccionan con un peso entre 200 a 400 gramos, con una edad aproximada de 4 a 6 meses, en el caso de los machos y las hembras entre 3 a 5 meses.Los individuos sexualmente maduros, son fácilmente identificables: las hembras presentan una papila genital prominente y rojiza, mientras que en el macho, dicha coloración se observa al borde de la aleta caudal y dorsal. Se recomienda elegir reproductores de cabeza angosta y pecho grueso, en relación al resto del cuerpo, que presente un aspecto sano, sin parásitos y malformaciones. Además, para seleccionar a los reproductores, hay que seleccionar individuos del mismo ciclo y que presenten tallas más grandes (Hsien-Tsang y Quintanilla, 2008).
Imagen 11.- La elección de los reproductores será realizada por expertos. Los organismos seleccionados deben cumplir con todos los requerimientos genéticos y fenotípicos (HsienTsang y Quintanilla, 2008).
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6.3. Estanques de reproductores Los estanques a utilizar en este tipo de cultivo, deben ser pequeños para un manejo más sencillo. El área de espacio puede variar de 100 a 500 m², con una profundidad máxima de 100 a 150 centímetros, donde se puede utilizar estructuras de concreto o jaula de malla. Dichas estructuras se pueden cubrir el fondo con arena, para mejorar la producción de alevines, u ocupar estanques pequeños de arcilla, para facilitar el manejo y la reproducción de los mismos (Hsien-Tsang y Quintanilla, 2008).
Figura 13. – Estanques pequeños para reproductores (Hsien-Tsang y Quintanilla, 2008).
6.4. Recolección de semillas Una vez eclosionados los huevos, la hembra mantiene las larvas en la boca; hasta que terminan de absorber el saco vitelino (Nicovita, 2002). Después de 10 a 15 días de sembrados los reproductores, se puede ver en la orilla del estanque, grupos de alevines que acaban de salir de la boca de la hembra. La recolección de jaramugos se realiza haciendo uso de una red fina y se trasladan a estanques de pre-cría, donde alcanzan un peso promedio de 1 a 2 gramos (Hsien-Tsang y Quintanilla, 2008). La cosecha de la semilla debe realizarse en la mañana, antes de alimentar, con sistemas de redes muy finas, cucharas de angeo y copos de tela mosquitera, para evitar elmaltrato de los alevines y su mortalidad. Luego de sacar los alevines del estanque de reproducción, es necesario separar los reproductores (machos y hembras) en estanques independientes para darles el descanso necesario (Nicovita, 2002). Se deben realizarmedidas profilácticas sobre cada uno de los estanques, artes de pesca y utensilios de recolección, para evitar el contagio de epidemia porreproductores que hubieran estado enfermos. Luego de la pesca se debe 48
realizar una selección a través de un tamiz de 8-10 milímetros; los animales que no logren atravesarlo, se descartan y los que pasen, entran al proceso de reversión (Nicovita, 2002). 6.5. Reversión sexual Debido a las diferencias de crecimiento entre el macho y la hembra, es necesario que los cultivos de tilapia sean monosexo (mayor porcentaje posible de machos).En la producción de tilapia es posible realizar el cultivomonosexo. El cultivo de solo machos se recomienda debido a la mayor tasa de crecimiento, mayor eficiencia en la tasa de conversión de alimento; además, es posible alcanzar tamaños de hasta un kilogramo de peso vivo en un año de producción y mayor rendimiento de filete. El cultivomonosexo se puede lograr de varias formas: a. Realizando el sexadomanual de los peces al alcanzar tamaños de 30-50 gramos de peso. b. Realizando reversión sexual utilizando alimento con 60 ppm de 17 alfa metiltestosterona durante los primeros 30 días de edad. Esta hormona es incluida a través de un vehículo (alcohol) en el alimento, cuyo nivel de proteína esgeneralmente alto (45%) y suministrada a razón de un 15% a 20% de la biomasa/día repartido en 8 racionescomomínimo. c. Realizando producción e híbridos que provienen y son garantizados de reproductores genéticamente manipulados (Nicovita, 2002). 6.6. Preparación del alimento hormonado Según Hsien-Tsang y Quintanilla (2008), se utiliza la hormona 17 alfa metiltestosterona (60 miligramos = mg.) que se disuelve en alcohol al 90% (700 mililitros = ml) y se mezcla con el concentrado de 40-50% de proteína (1 kilogramo = kg).Después de la mezcla, el alimento se deja secando durante 1 2 horas, a la sombra y moviéndola constantemente, para que las partículas de la hormona se adhirieran completamente al alimento y se evapore el alcohol. Luego se refrigera para su conservación. 6.7. Alimentación de Alevines Los alevines son recogidos de las infraestructuras de cruzamiento, con un tamaño aproximado de 3 a 5 milímetros (mm) y un peso promedio de 0.015 a 0.025 gramos. Se procede ha alimentar a partir del segundo día de siembra, con una proporción del 20% de biomasa corporal. La alimentación se proporciona entre 3 a 6 veces por día y en la primera semana 3 veces al día. Para la segunda semana, alimentarlos 4 veces al día y así sucesivamente, utilizando comederos de plástico. Así se facilita la observación del estado de 49
los alevines y el consumo del alimento. La cantidad de alimento se va aumentando según el peso promedio y el consumo alimenticio de los alevines. El tratamiento se realiza durante 28 días, siendo recomendable que los alevines no excedan los 18 milímetros (Hsien-Tsang y Quintanilla, 2008).
Figura 14.- Alimentación de alevines en comederos de plástico ((Hsien-Tsang y Quintanilla, 2008).
6.8. Infraestructuras para alevines 6.8.1. Piletas Se utilizan pilas de concreto, con un volumen total de 10 - 20 metros cúbicos (m³) e instala el sistema de aireación o agua corrida. Posteriormente se llenan con agua para la siembra. Luego se cubren con plástico transparente, para mantener una temperatura baja, en una zona fría. Lo ideal es colocar en las pilas, una densidad de siembra entre los 1,000 a 3,000 alevines por metro cúbico (Hsien-Tsang y Quintanilla, 2008).
Imagen 12.- Alevines en piletas de concreto (Globedia, 2014).
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6.8.2. Jaulas Para utilizar las jaulas se requiere de una malla de 32 mesh, de forma rectangular, con la que se cubre un área de 1.5 x 4 x 1m, 2 x 5 x1m, para un volumen de 6 - 10 m³. Estas se anclan con varillas en un estanque y se llenan a un nivel de 1.2 - 1.5 metros (m) de agua. De ese total, las jaulas solo alcanzan 0.90 m. Después de la alimentación, cada semana se tiene que limpiar la malla, para preservar un movimiento constante de agua entre la parte interna y externa de la jaula. Se recomienda colocar en las jaulas, una densidad de entre 3,000 a 5,000 alevines por metro cúbico.
Imagen 13.- Alevines en jaulas (FarmAqua, 2014).
6.9. Producción de alevines de tilapia genéticamente machos (TGM) Los “supermachos” son machos que presentan el novedoso genotipo YY, con dos cromosomas que determinan el sexo masculino en lugar de uno, como normalmente ocurre en el genotipo masculino que se produce de forma natural (XY). La técnica para producir los “supermachos” sigue la siguiente secuencia:
Seleccionar los mejores peces, con las características óptimas de peso y talla deseadas y se hacen criar entre los peces. A una parte de la generación obtenida (machos y hembras), se les suministra hormonas femeninas, lo que consigue convertir a cierto porcentaje de machos en hembras funcionales. Tendremos de esta manera, un tanto por ciento de hembras XX y otro tanto por ciento de hembras XY, aunque genéticamente son XY, fenotípicamente son hembras con capacidad reproductora. Estas hembras (XY) se cruzan ahora con machos normales, también XY. Entre su descendencia habrá hembras (XX), machos normales(XY) y los supermachos (YY). Para identificar los supermachos, entre el conjunto de machos, se cruzan con hembras normales (XX) y se observa la descendencia. 51
Mientras la generación filial procedente de los machos normales (XY) serán tanto hembras como machos, la descendencia de los “supermachos” serán todos genéticamente machos normales (XY). Para perpetuar la línea de supermachos, se necesitan hembras que sean genéticamente supermachos (YY) y que al cruzarlas con los supermachos machos (YY) toda la descendencia sean supermachos (YY). Toda la progenie de estos supermachos (YY) con hembras normales (XX) serán tilapias machos genéticamente mejorados (TGM). Todo éste proceso, arroja alevines que luego se utilizarán para obtener los peces destinados al consumo humano. La producción de machos TGM será un 58.8% más que la tilapia con sexo mixto y un 31.03% más que la tilapia con cambio de sexo hormonal (Hsien-Tsang y Quintanilla, 2008).
Figura 15.- Esquema de producción de tilapias supermachos, bajo condiciones controladas (Hsien-Tsang y Quintanilla, 2008).
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6.10. Manejo y transporte de alevines Existen cuatro factores determinantes en la sobrevivencia de los alevines en el sistema: 6.10.1. Manipulación de alevines El empleo de mallas suaves es la forma más recomendable de manipular alevines, dado que evita el contacto directo y permite un manejo rápido de gran volumen de animales. Los métodos desde la orilla son los más indicados, pero también se pueden realizar barridas totales de los estanques de reproducción. 6.10.2. Temperatura óptima del agua para alevines de tilapia Debido a que los alevines son altamente termófilos (susceptibles a cambios de temperatura), es necesariomantener un valor que sea constante y que está por encima de los 26ºC. Esto se consigue con la construcción de los estanques de reversión en materiales que almacenen un alto calor específico (tierra) o con el uso de recubrimientos como plástico (sistemas de invernadero) para elevar y mantener una temperatura estable. Los alevines que se mantengan en temperaturas por debajo de los 25ºC son susceptibles a inmuno suprimirse y ser atacados por agentes patógenos, aumentando la mortalidad (Nicovita, 2002). 6.10.3. Contenido proteínico del alimento de alevines Es necesario utilizar un alimento de alto contenido proteico (45%), energético y que sea tamizado para asegurar un consumo uniforme y fácil por parte del alevín. En general, el tamaño de la partícula que se debe suministrar durante el período de reversión debe estar entre los 0.5 y 0.8 milímetros (Nicovita, 2002). 6.10.4. Transporte y empaque de alevines para su posterior siembra de engorde De preferencia, ésta actividad tiene que realizarse en horas frescas o tempranas, para evitar cambios bruscos de temperatura. Se debe trasladar en vehículo liviano, para evitar altas mortalidades. Para solicitar alevines se hace con un mínimo de 3 días, previo a la entrega. Los alevines se recolectan y se colocan en pilas de lavado, con frecuentes recambios de agua. La aplicación de desinfectantes como yodo, formalina o cloro, evita las infecciones causadas por parásitos y/o bacterias. Antes del empaque y preparando el traslado, hay que equilibrar la temperatura del agua, con un poco de hielo, a promedios que rondan los 22 y 24 °C (Hsien-Tsang y Quintanilla, 2008).
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El conteo de los alevines se realiza por muestras, en un litro de agua, pesando un kilogramo de alevines para obtener la cantidad promedio de entrega. Cuando los alevines son trasladados en bolsas plásticas, se debe suministrar el 25% de agua y 50% de oxígeno y el otro 25% para amarre con banda de hule. Como se colocan 12 litros de agua en la bolsa plástica, (60 cm x 90 cm x 0.8 mm) estas pueden soportar hasta 800 gramos de biomasa de alevines. Por ejemplo, con alevines de 1 gramo, se puede trasladar 800 peces por bolsa. Con alevines de 2 gramos, se puede trasladar hasta 400 peces por bolsa. Cuando los alevines son trasladados en bidones plásticos, de preferencia tiene que ser un tanque de 700 litros, al que se le suministra 600 litros de agua con aireación, para trasladar hasta 85 mil alevines por viaje. No obstante, todo depende de la talla del alevín y del tiempo de traslado (Hsien-Tsang y Quintanilla, 2008). Al momento de transportar los alevines debemos revisar cuidadosamente que la bolsa no presente agujeros, que la distancia recorrida es menor a 4 horas y el auto o medio de transporte, esta en óptimas condiciones garantizando que los alevines llegan con bienestar a la siguiente etapa del cultivo.
Figura 16.-Empaquetamiento de alevines (SAGARPA, 2012).
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Figura 17.- Transporte de alevines en bolsas plásticas (SAGARPA, 2012).
Un factor importante antes de sembrar los alevines de Tilapia, es tener preparado la unidad de engorde, donde serán sembrados. Es necesario que las condiciones sean las ideales al momento de la siembra, ya que evita altas mortalidades y estrés en los peces. Es necesario mantener una buena fertilización, ya que esto provee de alimento natural a los alevines.
7. COMERCIALIZACIÓN DE LA TILAPIA 7.1. ¿Cómo conseguir la información de mercado? Para identificar las necesidades del mercado, es preciso reunir información de referencia que permita conocer el entorno social, político y económico del sector. Ello se puede obtener mediante fuentes secundarias o primarias; dentro de las fuentes secundarias existen:
Revistas especializadas del sector. Periódicos. Cámaras y asociaciones empresariales. Estudios de mercado ya existentes. Oficinas de gobierno. Internet.
7.2. ¿Qué es la comercialización? Para tener un mejor panorama sobre las oportunidades de la comercialización de la tilapia se debe de tomar en cuenta los siguientes puntos:
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1. Analizar las necesidades de las personas que consumen tilapia y decidir si los consumidores prefieren más cantidad o diferentes tipos de tilapia (valor agregado). 2. Prever qué tipos de tilapia desearán los distintos consumidores en lo que concierne a dimensiones y decidir cuáles de estas personas tratarán de satisfacer su deseo de compra. 3. Estimar cuántas de esas personas estarán consumiendo tilapia en los próximos años y qué cantidades comprarán. 4. Prever con la mayor exactitud, cuándo estos consumidores desearán comprar tilapia. 5. Determinar en dónde estarán estos consumidores y cómo ponerlas a su alcance. 6. Calcular que precio estarán dispuestos a pagar por ellas y si se obtendrán ganancias vendiendo a ese precio. 7. Decidir qué clase de promoción deberá utilizarse para que los probables clientes conozcan las características de la tilapia ofrecida. 8. Estimar cuántas empresas competidoras estarán produciendo tilapia, qué cantidad producirán, de qué clase y a qué precio. Las actividades anteriores no forman parte de la producción, ya que esta consiste en fabricar el producto o prestar servicios. Por el contrario, integran un proceso más especializado llamado “comercialización”, que provee la orientación necesaria para la producción y ayuda a lograr que se fabrique el producto adecuado y que llegue a los consumidores (SAGARPA, 2012).
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